Архив номеров
Медицинская Техника / №1, 2017 / с. 38-40

Устройство и способ определения скорости потребления кислорода изолированной перфузируемой печенью крысы

                                

К.В. Шадрин, В.Г. Пахомова, О.В. Крюкова, А.П. Рупенко


Аннотация

Предложен способ определения суммарной скорости потребления кислорода изолированной перфузируемой печенью крысы. Данный способ предполагает вычисление скорости потребления кислорода через сосудистое русло и через поверхность печени с последующим сложением при их измерении независимо друг от друга. Экспериментальные результаты, полученные этим способом, соответствуют результатам, полученным ранее с использованием манометрического способа измерения скорости потребления кислорода изолированной перфузируемой печенью.


Сведения об авторах

Константин Викторович Шадрин, мл. научный сотрудник, ФГБУН «Красноярский научный центр Сибирского отделения РАН», ст. преподаватель, ГБОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Министерства здравоохранения РФ,
Вера Геннадьевна Пахомова, инженер-исследователь,
Ольга Витальевна Крюкова, научный сотрудник,
Александр Петрович Рупенко, мл. научный сотрудник, ФГБУН «Красноярский научный центр Сибирского отделения РАН», г. Красноярск,
e-mail: kvsh_buffon@mail.ru

Список литературы

1. Carlsten A., Hallgren B., Jagenburg R., Svanborg A., Werkц L. Arterio-hepatic venous differences of free fatty acids and amino acids: Studies in patients with diabetes or essential hypercholesterolemia, and in healthy individuals // Acta Medica Scandinavica. 1967. Vol. 181. № 2. РР. 199-207.
2. De Lannoy I.A.M., Barker F., Sandy Pang K. Formed and preformed metabolite excretion clearances in liver, a metabolite formation organ: Studies on enalapril and enalaprilat in the single-pass and recirculating perfused rat liver // Journal of Pharmacokinetics and Biopharmaceutics. 1993. Vol. 21. № 4. РР. 395-422.
3. Lutz J., Henrich H., Bauereisen E. Oxygen supply and uptake in the liver and the intestine // Pflьgers Archiv. 1975. Vol. 360. № 1. PP. 7-15.
4. Mollica M.P., Iossa S., Liverini G., Soboll S. Steady state changes in mitochondrial electrical potential and proton gradient in perfused liver from rats fed a high fat diet // Molecular and Cellular Biochemistry. 1998. Vol. 178. PP. 213-217.
5. Noiret L., Baigent S., Jalan R. Arterial ammonia levels in cirrhosis are determined by systemic and hepatic hemodynamics, and by organ function: A quantitative modelling study // Liver International. 2014. Vol. 34. № 6. PP. e45-e55.
6. Clark L.C., Sachs G. Bioelectrodes for tissue metabolism // Annals of the New York Academy of Sciences. 1968. Vol. 148. Bioelectrodes. PP. 133-153.
7. Нефедов В.П., Рупенко А.П., Валук В.А., Панов А.В., Вавилин В.А. Модификация действия адреналина на метаболизм тканей изолированной печени крыс при перфузии средами различного состава // Успехи гепатологии. 1990. Т. 15. С. 335-352.
8. Рупенко А.П., Круглик О.В., Моргулис И.И. Снабжение печени кислородом в условиях изолированной перфузии // Доклады Академии наук. 2008. Т. 418. № 1. С. 128-130.
9. Рупенко А.П., Круглик О.В., Моргулис И.И. Функциональная активность изолированной перфузируемой печени крыс зависит от состава среды // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. Т. 146. № 7. С. 117-120.
10. Bakker J.C., Gortmaker G.C., Vrolijk A.C.M., Offerijns F.G.J. The influence of the position of the oxygen dissociation curve on oxygen-dependent functions of the isolated perfused rat liver. I. Studies at different levels of hypoxic hypoxia // Pflьgers Archiv. January. 1976. Vol. 362. № 1. PP. 21-31.
11. Sugano T., Suda K., Shimada M., Oshino N. Biochemical and ultrastructural evaluation of isolated rat liver systems perfused with a hemoglobin-free medium // The Journal of Biochemistry. 1978. Vol. 83. № 4. PP. 995-1007.
12. Гительзон И.И., Нефедов В.П., Самойлов В.А. Культура изолированных органов. – Л.: Наука, 1977. 196 с.
13. Orman M.A., Ierapetritou M.G., Androulakis I.P., Berthiaume F. Metabolic response of perfused livers to various oxygenation conditions // Biotechnology and Bioengineering. 2011. Vol. 108. № 12. PP. 2947-2957.